帳號:guest(18.216.120.209)          離開系統
字體大小: 字級放大   字級縮小   預設字形  

詳目顯示

以作者查詢圖書館館藏以作者查詢臺灣博碩士論文系統以作者查詢全國書目
作者(中文):王信凱
作者(外文):Wang, Hsin-Kai
論文名稱(中文):微型光生物反應器應用於活體細胞的即時表現與細菌光基因電路演化調控
論文名稱(外文):Mini photobioreactors for in vivo, real time characterization and evolutionary tuning of bacterial optogenetic circuit
指導教授(中文):楊雅棠
指導教授(外文):Yang, Ya-Tang
口試委員(中文):黃士豪
藍忠昱
口試委員(外文):Huang, Shih-Hao
Lan, Chung-Yu
學位類別:碩士
校院名稱:國立清華大學
系所名稱:電子工程研究所
學號:103063542
出版年(民國):106
畢業學年度:105
語文別:中文
論文頁數:60
中文關鍵詞:生物反應器演化自動化基因電路螢光偵測
外文關鍵詞:bioreactorevolveautomatedgene circuitfluorescent detection
相關次數:
  • 推薦推薦:0
  • 點閱點閱:70
  • 評分評分:*****
  • 下載下載:33
  • 收藏收藏:0
流式細胞儀是利用光照射細菌,來檢測細菌的光基因電路表現的標準方法,但是它必須先在外部誘發基因,再放進儀器中偵測基因表現,是需要耗費較多人力成本,而且實驗上也較為繁瑣。在本研究中,我們設計了一個工作體積約10ml的閃爍計數瓶的生物反應器,能夠即時偵測CCaS-CCaR光感測系統的基因表現。報導基因蛋白的光密度、螢光蛋白偵測和誘導基因的光源,由四個發光二極體和兩個光電晶體組成。經過市售偵測儀器校正之後,此實驗裝置能夠自動化操作,同時做細菌培養並記錄其生長和基因表現,不需要額外的人力操作。我們做了用不同有機物(葡萄糖、琥珀酸鹽、乙酸鹽和丙酮酸鹽)作為基本培養基的碳來源實驗,觀察其細菌生長的基因表達。還有透過連續稀釋步驟證明光基因電路調變的演化實驗。
Current standard protocol to characterize such optogenetic circuit of bacterial cells using flow cytometry in light tubes and well plates for light exposure is tedious, labor intensive and cumbersome. In this work, we engineer a bioreactor of working volume ~10 ml for in vivo, real time optogenetic characterization of E. coli with a CCaS-CCaR light sensing system. The optical density, fluorescence detection for reporter protein as well as the light input stimuli are provided by four light emitting diode sources and two photodetectors. Once calibrated, the device can cultivate the cells and record both the microbial growth and gene expression without human intervention. We measure gene expression for cell growth under different organic substrates(glucose, succinate, acetate, and pyruvate) as carbon source in minimal medium and demonstrate evolutionary tuning of optogenetic circuit by serial dilution passage.
目錄
誌謝 I
中文摘要 II
Abstract III
目錄 IV
圖目錄 VI
表目錄 VIII
一、緒論 1
1-1研究動機 1
1-2文獻回顧 3
1-2-1光基因電路的建構 3
1-2-2基因表現的檢測 5
1-2-3在不同培養基下的細菌生長 7
二、材料及方法 8
2-1製作感光大腸桿菌樣本 8
2-1-1 質體轉型 8
2-1-2 質體DNA萃取 10
2-1-3 電泳分析 12
2-2藥品配製 13
2-2-1 M9營養液配方 13
2-2-2抗生素配方 14
2-3系統架設 15
2-3-1 硬體架設 15
2-3-2 光感測生物反應器製作 18
2-3-3 自製攪拌系統 22
2-3-4 無線傳輸系統 23
2-3-5 升壓系統 25
2-3-6 Arduino程式編譯 26
2-4校正系統電壓 27
2-5光學量測方法 30
三、實驗結果 31
3-1實驗前準備步驟 31
3-2實驗步驟 32
3-2-1 大腸桿菌在不同碳來源培養基下的生長 32
3-2-2 大腸桿菌演化實驗 33
3-2-3 大腸桿菌在無氧環境下的生長 35
3-3培養結果 36
3-3-1大腸桿菌在不同碳來源培養基下的生長 36
3-3-2大腸桿菌演化實驗 39
3-3-3 大腸桿菌在無氧環境下的生長 43
四、結論及討論 44
附錄 46
A-1 Arduino 程式碼 46
A-5 生物反應器與壓克力盒設計圖 53
參考文獻 58

圖目錄
圖1-1. 光基因電路示意圖 (本圖擷取自參考文獻[5]) 4
圖1-2. 光切換造成基因表現的開關 (本圖擷取自參考文獻[19]) 4
圖1-3. 測量光密度系統 (本圖擷取自參考文獻[14]) 6
圖1-4. 兩種光切換的曝光陣列系統 (本圖擷取自參考文獻[19]) 6
圖1-5. 光密度與螢光的偵測系統 (本圖擷取自參考文獻[16]) 6
圖2-1. 質體轉型成果 9
圖2-2. 質體轉型成果 15
圖2-3. 系統實體圖 16
圖2-4. (a)發光二極體(940nm)偏壓電路 (b)光電晶體偏壓電路 19
圖2-5. (a)發光二極體(470nm)偏壓電路 (b)光電晶體偏壓電路 19
圖2-6. (a)發光二極體及電晶體轉接頭 (b)光學濾片轉接頭 (c)90度角螢光偵測模組 (d)135度角光密度偵測模組 (e) LED燈條裝載示意圖 21
圖2-7. (a)磁石攪拌器(b)達靈頓電路晶片 22
圖2-8. NRF24L01+無線收發模組 23
圖2-9. 發送與接收微控制器 24
圖2-10. 升壓模組 25
圖2-11. Arduino編譯程式與讀取介面 26
圖2-12. 電壓值與OD值校正 28
圖2-13. 電壓值與GFP值校正 28
圖2-14. PWM與綠光功率校正 29
圖2-15. PWM與紅光功率校正 29
圖2-16. 光學量測位置示意圖 30
圖3-1. 大腸桿菌預養示意圖 31
圖3-2. 大腸桿菌演化實驗示意圖 34
圖3-3. 大腸桿菌在暗室和綠光下的實驗流程圖 34
圖3-4. 無氧系統示意圖 35
圖3-5. 綠光條件下的大腸桿菌OD對時間 37
圖3-6. 綠光條件下的大腸桿菌GFP對時間 38
圖3-7. 綠光條件下的大腸桿菌GFP/OD對時間 38
圖3-8. 綠光條件下的大腸桿菌生長速率對時間 40
圖3-9. 綠光條件下的大腸桿菌基因表現對時間 41
圖3-10. 綠光條件下的大腸桿菌GFP/OD對生長速率 41
圖3-11. 綠光和暗室條件下基因表現的誤差比率 42
圖3-12. 大腸桿菌在有氧和無氧環境下的OD對時間 43
圖4-1. 藻類裝置實體圖 45

表目錄
表2-1. 系統零件表 17
表2-2. NRF24L01+與Arduino Mega2560的相對腳位連接 24
表3-1. 四種碳源培養基在綠光和暗室條件下的大腸桿菌生長速率比較 37

[1] Levskaya, A., Chevalier, A. A., Tabor, J. J., Simpson, Z. B., Lavery, L. A., Levy, M., Davidson, E. A., Scouras, A., Ellington, A. D., Marcotte, E. M., and Voigt, C. A. (2005) Synthetic biology: Engineering Escherichia coli to see light. Nature 438, 441-442.
[2] Möglich, A., and Moffat, K. (2007) Structural basis for light- dependent signaling in the dimeric LOV domain of the photosensor YtvA. J. Mol. Biol. 373, 112-126.
[3] Möglich, A., Ayers, R. A. & Moffat, K. Design and signaling mechanism of light-regulated histidine kinases. J. Mol. Biol. 385, 1433–1444 (2009).
[4] Ohlendorf, R., Vidavski, R. R., Eldar, A., Moffat, K. and Möglich, A.(2012) From dusk till dawn: one-plasmid systems for light-regulated gene expression. J. Mol. Biol. 416, 534-542.
[5] Schmidl, S. R., Sheth, R. U., Wu, A., and Tabor, J. J. (2014) Refactoring and optimization of light-switchable Escherichia coli two-component systems. ACS. Synth. Biol., 3, 820-831.
[6] Ryu, M.-H. & Gomelsky, M. (2014) Near-infrared light responsive synthetic c-di-GMP module for optogenetic applications. ACS Synth. Biol. 3, 802–810.
[7] Shimizu-Sato, S., Huq, E., Tepperman, J. M. and Quail, P. H. (2002) A light-switchable gene promoter system. Nat. Biotechnol. 20, 1041–1044.
[8] Kennedy, M. J. et al. Rapid blue-light-mediated induction of protein interactions in living cells. (2010) Nat. Methods 7, 973–975.
[9] Rizzini, L. et al. (2011) Perception of UV-B by the Arabidopsis UVR8 protein. Science 332, 103–106.
[10] Richter, F. et al. (2015) Upgrading a microplate reader for photobiology and all-optical experiments. Photochem. Photobiol. Sci. 14, 270–279 (2015).
[11] Olson, E. J., Hartsough, L. A., Landry, B. P., Shroff, R., and Tabor, J. J. (2014) Characterizing bacterial gene circuit dynamics with optically programmed gene expression signals. Nat. Methods 11, 449-455.
[12] Gerhardt, K. P. et al. (2016) An open-hardware platform for optogenetics and photobiology. Sci. Rep. 6, 35363; doi: 10.1038/srep35363 (2016).
[13] Lee, J. M., Lee, J., Kim, T. and Lee, S. K. (2013) Switchable gene expression in Escherichia coli using a miniaturized photobioreactor. PLoS One 8, e52382 (2013).
[14] Liu, P. C., Lee, Y. T., Wang, C.Y., and Yang, Y. T. (2016) Design and use of a low cost, automated morbidostat for adaptive evolution of bacteria under antibiotic drug selection. J. Vis. Exp. 1154, e54426, xx-xx.
[15] Toprak, E., Veres, A., Yildiz, S., Pedraza, J. M., Chait, R., Paulsson, J., and Kishony, R. (2013) Building a morbidostat: An automated continuous-culture device for studying bacterial drug resistance under dynamically sustained drug inhibition. Nat. Protoc. 8, 555−567.
[16] Takahashi, C. N., Miller, A. W., Ekness, F., Dunham, M. J., and Klavins, E. (2014) A low cost, customizable turbidostat for use in synthetic circuit characterization. ACS Synth. Biol., DOI: 10.1021/ sb500165g.
[17] Paliy, O., Gunasekera, T. S. Growth of E. coli BL21 in minimal media with different gluconeogenic carbon sources and salt contents. Appl. Microbiol. Biotechnol. 73, 1169-1172, (2007).
[18] Orth, J. D., Thiele, I., Palsson, B. Ø., What is flux balance analysis, Nat. Biotech., 28, 245-248, (2010).
[19] Olson, E. J., Hartsough, L. A., Landry, B. P., Shroff, R. and Tabor, J. J. (2014) Characterizing bacterial gene circuit dynamics with optically programmed gene expression signals. Nature Methods, 11, 449-455
 
 
 
 
第一頁 上一頁 下一頁 最後一頁 top
* *